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Allozyme variation among populations of the groundnut seed-beetle, Caryedon serratus (Ol.) in Senegal

Published online by Cambridge University Press:  19 September 2011

M. Sembene ,
J. P. Brizard  and
A. Delobel
M. Sembene
Affiliation:
Laboratoire de Protection des Stocks ITA-ORSTOM, B.P. 2765, Dakar, Sénégal
J. P. Brizard
Affiliation:
Laboratoire de Génétique et d'Amélioration des Plantes ORSTOM, B.P. 1386, Dakar, Sénégal
A. Delobel
Affiliation:
Laboratoire de Protection des Stocks ITA-ORSTOM, B.P. 2765, Dakar, Sénégal
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Abstract

Starch gel electrophoresis was used to compare eight loci in six enzymatic systems of 17 samples of the groundnut seed-beetle, Caryedon serratus (Ol.) (Coleoptera: Bruchidae) bred on five different host-plant species: Arachis hypogaea, Bauhinia rufescens, Cassia sieberiana, Piliostigma reticulatum and Tamarindus indica. The rate of polymorphism was 44.8%. The average genetic diversity (Hw) was 0.184. Allozyme variability analysis indicated that seed-beetles associated with P. reticulatum and groundnut, Arachis hypogaea were genetically similar, whereas other samples clustered according to their host plant species. Geographical distances less than 400 km were not decisive for the genetic structuring of samples associated with a given host plant.

Résumé

L'électrophorèse sur gel d'amidon a permis de comparer huit loci appartenant à six systèmes enzymatiques chez dix-sept échantillons de bruche de l'arachide provenant de cinq plantes hôtes différentes: Arachis hypogaea, Bauhinia rufescens, Cassia sieberiana, Piliostigma reticulatum et Tamarindus indica. Le taux de polymorphisme est de 44,8%. La diversité génétique moyenne (Hw) est de 0,184. L'analyse de la variabilité allozymique montre que les bruches inféodées à P. reticulatum et à l'arachide sont génétiquement très proches, alors que les autres échantillons se regroupent en fonction de leur espèce hôte. Les distances géographiques inférieures à 400 km ne sont pas déterminantes dans la structuration génétique des échantillons d'une plante hôte donnée.

Keywords

Caryedon serratusseed-beetlegroundnutpopulationgeneticselectrophoresisallozyme variationCaryedon serratus bruchearachidepopulationgénétiqueélectrophorèseallozyme
Type
Research Articles
Information
International Journal of Tropical Insect Science , Volume 18 , Issue 1 , March 1998 , pp. 77 - 86
Copyright
Copyright © ICIPE 1998

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References

Ali-Diallo, B. (1991) Biologie de Caryedon serratus (Ol.) en présence de ses plantes hôtes sur le terrain et en conditions expérimentales. Thèse de Doctorat, Université de Niamey.Google Scholar
Anonymous (1991) STAT-ITCF. Manuel d'utilisation. Institut Technique des Céréales et des Fourrages, Paris.Google Scholar
Borowiec, L. (1987) The genera of seed-beetles (Coleoptera, Bruchidae). Polsk. Pismo Entomol. 57, 3–207.Google Scholar
Davey, P. M. (1958) The groundnut bruchid, Caryedon gonagra (F.). Bull. Entomol. Res. 49, 385–404.Google Scholar
Delobel, A. (1995) The shift of Caryedon serratus (Ol.) from wild Caesalpiniaceae to groundnuts took place in West Africa (Coleoptera: Bruchidae). J. stored Prod. Res. 31, 101–102.CrossRefGoogle Scholar
Delobel, A. and Matokot, L. (1991) Control of groundnut insect pests in African subsistence farming. Proc. 5th Int. Work. Conf. Stored Prod. Prot., Bordeaux, vol. 3, 1599–1607.Google Scholar
Dick, K. M. (1987) Losses caused by insects to groundnuts stored in a warehouse in India. Trop. Sci. 27, 65–75.Google Scholar
Gagnepain, C., Gillon, Y. and Leroux, J. M. (1986) Caryedon serratus (Col. Bruchidae), principal insecte consommateur des gousses de Piliostigma thonningii (Caesalpiniaceae) en savane de Lamto (Côte d'Ivoire). Ann. Soc. Entomol. Fr. 22, 457–467.CrossRefGoogle Scholar
Gillier, P. and Bockelée-Morvan, A. (1979) La protection des stocks d'arachide contre les insectes. Oléagineux 3, 131–137.Google Scholar
Hartl, D. L. (1994) Génétique des Populations. Médecine-Sciences, Flammarion, Paris. 305 pp.Google Scholar
Hsiao, T. H. and Stutz, J. M. (1985) Discrimination of alfalfa weevil strains by allozyme analysis. Entomol. exp. appl. 37, 113–121.CrossRefGoogle Scholar
Jacobson, J. W. and Hsiao, T. H. (1983) Isozyme variation between geographic populations of the Colorado potato beetle, Leptinotarsa decemlineata (Coleoptera: Chrysomelidae). Ann. Entomol. Soc. Amer. 76, 162–166.Google Scholar
Johnson, C. D. (1986) Caryedon serratus (Olivier) (Bruchidae) established in northern and southern America with additional host and locality recorded from Mexico. Coleopt. Bull. 40, 264.Google Scholar
Kassem, H. A., Fryauff, D. J., Shehata, M. G. and El Sawaf, B. M. (1993) Enzyme polymorphism and genetic variability of one colonized and several field populations of Phlebotomus papatasi (Diptera: Psychodidae). J. Med. Entomol. 30, 407–413.CrossRefGoogle ScholarPubMed
Krafsur, E. S., Obrycki, J. J. and Flanders, R. V. (1992) Gene flow in populations of the seven-spotted lady beetle, Coccinella septempunctata. Heredity 83, 440–444.Google Scholar
Lebrun, P. and Chevallier, M. H. (1990) Starch and Polyacrilamide Gel Electrophoresis of Hevea brasiliensis. A Laboratory Manual. I.R.C.A.-C.I.R.A.D.-Publisher, France. 55 pp.Google Scholar
Matokot, L., Mapangou-Divassa, S. and Delobel, A. (1987) Evolution des populations de Caryedon serratus (Ol.) dans les stocks d'arachide au Congo. Agron. trop. 42, 69–74.Google Scholar
Menken, S. B. J. (1982) Biochemical genetics and systematics of small ermine moths (Lepidoptera: Yponomeutidae). Zool. Syst. Evolut.-Forsch. 20, 131–143.Google Scholar
Moretti, J., Broussier, G. and Jayle, M. F. (1957) Réalisation technique et premières applications de l'électrophorèse sur gel d'amidon. Bull. Soc. Chim. Biol. 39, 593–605.Google Scholar
Ndiaye, S. (1991) La bruche de l'arachide dans un agrosystème du centre-ouest du Sénégal: Contribution à l'étude de la contamination en plein champ et dans les stocks de l'arachide (Arachis hypogaea L.) par Caryedon serratus (Ol.) (Coleoptera-Bruchidae); rôle des légumineuses hôtes sauvages dans le cycle de cette bruche. Thèse de Doctorat, Université de Pau et des Pays de l'Adour.Google Scholar
Ndiaye, S. and Jarry, M. (1990) Importance de certaines légumineuses arborées et arbustives au Sénégal dans le cycle de Caryedon serratus (Ol.), et influence sur la contamination en plein champ de l'arachide (Aradas hypogea L.). Proc. 5th Int. Work. Conf. Stored Prod. Prot, Bordeaux, 1990, vol. 3, 1663–1669.Google Scholar
Nevo, E. (1978) Genetic variationin natural populations: Patterns and theory. Theor. Popul. Biol. 13, 121–177.CrossRefGoogle Scholar
Ohiazzarli, N., Lumaret, R., Villemur, P. and Di Giusto, F. (1993) Leaf allozyme variation in cultivated and wild olives trees (Olea europaea L. ). J. Heredity 84, 34–42.Google Scholar
Pasteur, N., Pasteur, G., Bonhomme, F., Catalan, J. and Britton-Davidian, J. (1987) Manuel Technique de Génétique par Electrophorèse des Protéines. Lavoisier, Technique et Documentation, Paris.Google Scholar
Raymond, M. and Rousset, F. (1995) Genepop (V. 1.2): A population genetics software for exact tests ecumenicism. J. Heredity 86, 248–249.Google Scholar
Robert, P. (1984) Contribution à l'étude de l'écologie de la bruche de l'arachide: Caryedon serratus Ol (Coléoptère, Bruchidae), sur ses différentes plantes hôtes. Thèse de Doctorat, Université François Rabelais, Tours.Google Scholar
Roubaud, E. (1916) Les insectes et la dégénérescence des arachides au Sénégal. Mém. Comité Etudes Hist. Scient. A.O.F. 1, 363–438.Google Scholar
Sembène, M. and Delobel, A. (1996) Identification morphométrique de populations soudanosahéliennes de bruche de l'arachide, Caryedon serratus (Olivier) (Coleoptera-Bruchidae). J. Afr. Zool. 110, 357–366.Google Scholar
Swofford, D. L. and Seiander, R. B. (1981) Biosys-1: A Fortran program for the comprehensive analysis of electrophoretic data in population genetics and systematics. J. Heredity 72, 281–283.CrossRefGoogle Scholar
Terranova, A. C. (1981) Polyacrylamide gel electrophoresis of Anthonomus grandis Boheman proteins. USDA, SEA, Agronomical Research Results ARR-S-9.Google Scholar
Ward, R. D., Skibinski, D. O. F. and Woowark, M. (1992) Protein heterozygosity, protein structure and taxonomic differentiation. Evolution. Biol. 26, 73–159.Google Scholar
Yong, H. S. (1992) Allozyme variation in the melon fly Dacus cucurbitae (Inserta: Diptera: Tephritidae) from peninsular Malaysia. Comp. Blochem. Physiol. 102 (B), 367–370.Google Scholar