Hostname: page-component-77c89778f8-vsgnj Total loading time: 0 Render date: 2024-07-17T07:52:01.074Z Has data issue: false hasContentIssue false

Systèmes de transport de la sérotonine et antidépresseurs

Published online by Cambridge University Press:  28 April 2020

AM Galzin
Affiliation:
Synthélabo Recherche (LERS), 58, rue de la Glacière, 75013Paris, France
D Graham
Affiliation:
Synthélabo Recherche (LERS), 58, rue de la Glacière, 75013Paris, France
SZ Langer*
Affiliation:
Synthélabo Recherche (LERS), 58, rue de la Glacière, 75013Paris, France
*
*Correspondance et tirés á part.
Get access

Résumé

Le transporteur de la sérotonine sodium-dépendant est associé à la membrane plasmatique des plaquettes et des terminaisons nerveuses sérotoninergiques et constitue le mécanisme physiologique d’inactivation de la sérotonine. Un déficit en sérotonine est associé à la pathophysiologie de la dépression, et il a été suggéré que des modifications du transporteur de la sérotonine pouvaient exister au moment des épisodes dépressifs. En particulier, le nombre de sites transporteurs pourrait être diminué sur les plaquettes sanguines de patients déprimés, et des résultats comparables ont été obtenus dans certaines régions du cerveau humain post-mortem. Les inhibiteurs tricycliques et nontricycliques de la capture de sérotonine sont des antidépresseurs efficaces. Cependant, il existe une période de latence de 2 à 3 semaines entre le début du traitement et l’effet thérapeutique maximal. C’est pourquoi les études consacrées aux propriétés biochimiques et à la caractérisation moléculaire du transporteur de la sérotonine sont d’un intérêt particulier. La capture de la sérotonine par le transporteur êeut être inhibée sélectivement par le citalopram, la paroxétine, l’indalpine, la fluoxétine et le SL 81 0385. Cet effet se traduit in vitro par une augmentation de la neurotransmission sérotoninergique comme on a pu le montrer pour la paroxétine et le SL 81 0385 sur la libération de sérotonine induite par stimulation électrique dans des coupes de cortex frontal humain. Les dérivés marqués inhibiteurs de la capture tels que l’imipramine-[3H], la paroxétine-[3H] et le citalopram-[3H] ont été utilisés comme ligands spécifiques pour caractériser le transporteur. Dans les expériences de dissociation de la liaison de la paroxétine-[3H] aux membranes de cortex cérébral de rat, le citalopram, l’indalpine, la fluoxétine, le SL 81 0385, l’imipramine et la sérotonine ont des valeurs de 1½ de dissociation similaires à celle obtenue pour la paroxétine. De plus, le SL 81 0385, la fluoxétine, l’imipramine et la sérotonine induisent une protection contre l’inactivation de la liaison de la paroxétine-[3H] par le N-éthylmaléimide aux membranes de cortex cérébral de rat. Ces résultats suggèrent que le domaine de liaison des inhibiteurs tricyliques et non-tricycliques de la capture de sérotonine correspond à un site d’exclusion mutuelle par rapport au site de reconnaissance du substrat. Le transporteur neuronal de la sérotonine des membranes de cortex cérébral de rat a été solubilisé et purifié par chromatographie d’affinité sur une résine agarose à laquelle un dérivé du citalopram a été fixé par liaison covalente. La liaison de la paroxétine-[3H] à la préparation purifiée est caractérisée par un Kd de 0.71 nM et un Bmax supérieur à 1 962 pmol/mg de protéines. La purification du transporteur se traduit par un accroissement de plus de 3 000 fois de l’activité de la liaison de la paroxétine-[3H] par rapport à celle de la préparation membranaire initiale. Le profil pharmacologique de la liaison de la paroxétine-[3H] à cette préparation purifiée est préservé puisque les valeurs de Ki pour le citalopram, l’imipramine et la sérotonine sont respectivement de 19 nM, 80 nM et 3,5 μM, comparables aux Ki de ces composés sur la liaison de la paroxétine-[3H] aux membranes de cortex cérébral de rat. La purification du transporteur ainsi obtenue est la première étape qui doit permettre d’analyser les propriétés fonctionnelles du transporteur au niveau moléculaire.

Summary

Summary

The sodium-dependent serotonin transport associated with plasmatic membranes of platelets or serotonin nerve terminals serves to inactivate the neurotransmitter and maintain low levels of transmitter in the synoptic cleft. It has been suggested that changes in serotonergic transmission could be linked to the pathophysiology of depression, and that modifications at the level of the serotonin transporter could exist during depressive episodes. A consistent decrease in the number of transporter sites has been reported in blood platelets from depressed patients, and similar results were also obtained in some regions of the post-mortem human brain. It is well established that tricyclic and nontricyclic serotonin uptake inhibitors are effective as antidepressant drugs, but a lag period of 2-3 wks is observed between the beginning of treatment and the clinical manifestation of therapeutic antidepressanl effects. Therefore, studies on biochemical properties and molecular characterization of the serotonin transporter are of particular interest. Serotonin uptake can be selectively inhibited by citalopram, paroxetine, indalpine, fluoxetine and SL 81 0385. Moreover, this inhibition by paroxetine and SL 81 0385 has been shown to induce an increase in the electrically-evoked in vitro release of [3H]-5-HT from slices of the human frontal cortex. Radioligand binding studies with [3H]-imipramine, [3H]-paroxetine and [3H]-citalopram have been used in recent years to characterize the serotonin transporter. In dissociation kinetics experiments of [3H]-paroxetine binding to rat cerebral cortical membranes, exposure to citalopram, indalpine, fluoxetine, SL 81 0385, imipramine as well as serotonin itself produced monophasic dissociation curves with t½ values of dissociation similar to that obtained for paroxetine itself. Moreover, SL 81 0385, fluoxetine, imipramine and serotonin can protect [3H]-paroxetine binding against N-ethylmaleiinide-induced inactivation. Combined, these results suggest that the substrate and the tricyclic and nontricyclie serotonin uptake inhibitors bind to the same (or at least overlapping) domains on the sodium-coupled serotonin transporter. The neuronal serotonin transporter has been solubilized from rat cerebral cortex membranes, and purified by affinity chromatography using an agarose gel to which a citalopram derivative had been covalently coupled. [3H]-paroxetine binding to a purified preparation gave a Kd value of 0.71 nM and a value of Bmax greater than 1.962 pmoles/mg prot, corresponding to an enrichment of more than 3000-fold of [3H]-paroxetine binding activity compared to that of the parent membrane preparation. The binding of [3H]-paroxetine to this purified preparation was inhibited by citulopram, imipramine and serotonin with Ki values of 19 nM, 80 nM and 3.5 μM, respectively, thereby confirming that an extensive purification of the sodium-coupled serotonin transporter had been achieved. This purification of the 5-HT carrier protein is the first step which should ultimately permit a detailed insight into the molecular mechanisms operating in this transport process.

Type
Article Original
Copyright
Copyright © European Psychiatric Association

Access options

Get access to the full version of this content by using one of the access options below. (Log in options will check for institutional or personal access. Content may require purchase if you do not have access.)

References

Références

Bech, P, Eplov, L, Gastpar, M, Gentsch, C, Mendlewicz, J, Plenge, P, Rielart, C, Mellerup, ET (1988) WHO Pilot Study on the Validity of Imipramine Platelet Receptor Binding Sites as a Biological Marker of Endogenous Dépréssion. A Preliminary Report on the Initial Evaluation Phase of a World Health Organisation Collaborative Study. Pharmacopsychiatry 21, 147150CrossRefGoogle Scholar
Braestrup, C, Nielsen, M (1980) Multiple Benzodiazépine Receptors. Prends Neurosci 3, 301Google Scholar
Briley, MS, Langer, SZ, Raisman, R, Sechter, D, Zarifian, E (1980) Tritiated Imipramine Binding Sites are Decreased in Platelets of Untreated Depressed Patients. Science 209, 303305CrossRefGoogle ScholarPubMed
Galzin, AM, Langer, SZ (1987) Circadian Rhythm of the Bmax of [3H]-Imipramine Binding in Rabbit Platelets. Naunyn-Schmiedebergs Arch Pharmacol 336, 464466CrossRefGoogle Scholar
Galzin, AM, Poirier, MF, Lista, A, Chodkiewicz, JP, Blier, P, Ramdine, R, Loo, H, Roux, FX, Redondo, A, Langer, SZ (1990) Characterization of the 5-HT Autoreceptor Modulating the Release of [3H]-5-HT in Slices of the Human Frontal Cortex. J Neurochem (in press)Google Scholar
Galzin, AM, Poirier, MF, Schoemaker, H, BenHadjAli, B, Galinovski, A, Sechter, D, Loo, H, Langer, SZ. Circadian Rhythm of [3H]-Imipramine Binding in Platelets from Healthy Volunteers: Comparison between Summer and Winter. Science, submittedGoogle Scholar
Graham, D, Langer, SZ (1988) The Neuronal Sodium- Dependent Serotonin Transporter: Studies with [3H]Imipramine and [3H]Paroxetine. In: Neuronal Serotonin (Osborne, NN, Hamon, M, eds), Wiley, Chichester, 367-391Google Scholar
Graham, D, Esnaud, H, Habert, E, Langer, SZ (1989) A Common Binding Site for Tricyclic and Non- Tricyclic 5-hydro.xytryptamine Uptake Inhibitors at the Substrate Recognition Site of the Neuronal Sodium-Dependent 5-hydroxytryptamine Transporter. Biochein Pharmacol 21, 38193826CrossRefGoogle Scholar
Habert, E, Graham, D, Tahraoui, L, Claustre, Y, Langer, SZ (1985) Characterization of [3H]Paroxetine Binding to Rat Cortical Membranes. Eur J Pharmacol 118, 107114CrossRefGoogle ScholarPubMed
Habert, E, Graham, D, Langer, SZ (1986) Solubilization and Characterization of the 5-hydroxytryptamine Transporter Complex from Rat Cerebral Cortical Membranes. Eur J Pharmacol 122, 197204CrossRefGoogle ScholarPubMed
Langer, SZ, Galzin, AM, Poirier, MF, Loo, H, Sechter, D, Zarifian, E (1987) Association of [3H]- imipramine and [3H]-paroxetine Binding with the 5HT Transporter in Brain and Platelets: Relevance to Studies in Dépréssion. J Rec Res 7, 499521Google Scholar
Langer, SZ, Galzin, AM (1988) Studies on the Serotonin Transporter in Platelets. Experientia 44, 127130CrossRefGoogle ScholarPubMed
Langer, SZ, Schoemaker, H (1988) Effects of Antidepressants on Monoamine Transporters Prog Neuro-Psychopharmacol. Biol Psychiat 12, 193216Google Scholar
Langer, SZ, Schoemaker, H (1989) Presynaptic Sites of Antidepressant Action: Monoamine Transport Systems and Release-modulating Autoreceptors. In: New Directions in Affective Disorders (Lerer, B, ed), Springer Verlag, sous presseGoogle Scholar
Rocca, P, Galzin, AM, Langer, SZ (1989) Light-Dark Differences in [3H]-paroxetine Binding to Rabbit Platelet Membranes. Naunyn-Schmiedeberg's Arch Pharmacol 340, 4144CrossRefGoogle ScholarPubMed
Scatton, B, Claustre, Y, Graham, D, Dennis, T, Serrano, A, Arbilla, S, Pimoule, C, Schoemaker, H, Bigg, D, Langer, SZ (1988) SL 81 0385: a Novel Se;lective and Potent Serotonin Uptake Inhibitor. Drug Dev Res 12, 2940CrossRefGoogle Scholar
Sette, M, Rubert, M, Raisman, R, Scatton, B, Zivkovic, B, Agid, Y, Langer, SZ (1983) [3H]lmipramine Binding in Subcellular Fractions of the Rat Cérébral Cortex after Chemical Lésion of 5-HTergic Neurons. Eur J Pharmacol 95, 4151CrossRefGoogle Scholar
Shopsin, B, Friedmann, E, Gershon, S (1976) Parachlorophenylalanine Reversal of Tranylcypromine Effects in Depressed Patients. Arch Gen Psychiat 33, 811819CrossRefGoogle ScholarPubMed
Submit a response

Comments

No Comments have been published for this article.