Hostname: page-component-5c6d5d7d68-txr5j Total loading time: 0 Render date: 2024-08-20T06:38:51.316Z Has data issue: false hasContentIssue false

Activation de bourgeons latents et utilisation de fragments de tige du bananier pour la propagation en masse de plants en conditions horticoles in vivo

Published online by Cambridge University Press:  15 December 2003

Moïse Kwa*
Affiliation:
Centre Africain de Recherches sur Bananiers et Plantains (CARBAP), Njombe, BP 832, Douala, Cameroun
Get access

Abstract

Introduction. Les techniques de multiplication in vitro de bananiers ne sont pas adaptées aux paysans. Par ailleurs, l'utilisation de techniques de pépinière in vivo permet d'augmenter le taux de multiplication des bananiers au champ, mais elle présente le risque de multiplier du matériel contaminé et de perdre de nombreux bourgeons présents sur le pied mère. Pour pallier ces problèmes, nous avons mis au point au CARBAP (Cameroun) une nouvelle technique de multiplication de masse in vivo, la technique des “plants issus de fragments de tige” (PIF) qui permet d'activer des bourgeons latents et de produire rapidement hors sol des quantités importantes d'un matériel de plantation sain. Matériel et méthodes. L'activation des bourgeons latents a été testée au cours d'une première expérience. Des explants munis d'un seul bourgeon ont été prélevés sur des tiges de bananiers de trois variétés de plantain (AAB) et d'une variété de banane (AAA), puis ils ont été ensemencés dans un germoir. Une deuxième expérience a testé les capacités de prolifération de certains bananiers. Des explants à plusieurs bourgeons, obtenus à partir de petits rejets de bananier `Grande naine' (AAA) et de quatre cultivars de plantains (AAB), ont été prélevés puis incisés en croix avant d'être mis en germoir. Le temps nécessaire à l'apparition des premières pousses, le taux de débourrement, le nombre de pousses formées et sevrées, et la durée de formation des pousses jusqu'au sevrage ont été mesurés. Résultats. À l'issue de la première expérience, les bourgeons récupérés 80 j après l'ensemencement des explants ont représenté (4 à 15) fois le nombre de pieds mères utilisés. Ce nombre a cependant varié avec la variété, l'état physiologique et la qualité du matériel initial. Il en a été de même pour le temps de réponse compris entre (3 et 4) semaines et pour le taux de débourrement des bourgeons. À l'issue de la deuxième expérience, des taux de prolifération moyens de (10 à 20) pousses par explant ont été obtenus en (30 à 40) j sur (60 à 70) % des explants de plantains. Au cours de cette même période, un maximum de 25 pousses par explant a été observé chez Bâtard tandis que French clair a pu produire, dans 13 % des cas, entre (28 et 36) pousses par explant. Conclusion. La technique des PIF permet d'induire in vivo une active prolifération de bourgeons sur des fragments de tige de bananiers dans des conditions particulières de température et d'hygrométrie et sans adjonction d'hormones. Elle est facilement utilisable par les planteurs.

Type
Research Article
Copyright
© CIRAD, EDP Sciences

Access options

Get access to the full version of this content by using one of the access options below. (Log in options will check for institutional or personal access. Content may require purchase if you do not have access.)

References

Dantas, J.L., Bananeira: propagacao ràpida traz vantagens, Lavoura (Brazil) 93 (1990) 3637.
Perez L., Comparación de varios métodos de propagación en banano, in: Contreras M.M.A., Guzmán Chaves J.A., Carrasco L.R. (Eds.), Mem. X reun., ACORBAT 91, ACORBAT, San José, Costa Rica, 1994, pp. 15–25.
Souza A. da S., Protocolo de micropropagacao de bananeira através de àpices caulinares, CNPMF, Cruz das Almas, Brazil, 1994, 2 p.
Alvard, D., Cote, F., Teisson, C., Comparison of methods of liquid medium culture for banana micropropagation, Plant Cell Tiss. Org. 32 (1993) 5560. CrossRef
Panis, B.J., de Smet, K., Dhed'a, D., Swennen, R., Cammue, B.P.A., The use of embryogenic Musa suspension cultures in biotechnology, Banan. Newsl. (Australia) 15 (1992) 4546.
Dhed'a, D., Dumortier, F., Panis, B., Vuylsteke, D., de Langhe, E., Plant regeneration in cell suspension cultures of the cooking banana cv. `Bluggoe' (Musa spp., ABB group), Fruits 46 (4) (1991) 125135.
Adelaja, B.A., Rapid on-farm multiplication technique for plantain and banana, Musafrica 8 (1995) 6.
Grisales López, F., Rapid technique for plantain multiplication in Colombia, Infomusa 3 (2) (1994) 7.
Godinho F. de P., Mudas de bananeira: tecnologia de producao, EPAMIG, Belo Horizonte, Brazil, 1994, 44 p.
Kwa M., Étude des techniques de multiplication du matériel végétal in vivo, in: Rapport technique 1996-1997, Doc. Interne, CRBP, Njombé, Cameroun, 1998, pp. 96–100.
Munoz, C., Vargas, H., Evaluación de la metodología de “multiplicación rápida" en plátano (Musa AAB), Corbana (Costa Rica) 21 (46) (1996) 141144.
Noupaja, P., Study of three field multiplication techniques for generating planting material of in vitro propagated plantain (Musa cvs. AAB), Musafrica 12 (8) (1995) 78.
Anonymous, Split-corm technique: appropriate technology for rapid multiplication of plantain sucker, Crops Research Institute (CRI), Kumasi (GHA) Musafrica (6) (1995/03) 1–2.
Bonte, E., Verdonck, R., Grégoire, L., La multiplication rapide du bananier et du plantain au Cameroun, Tropicultura 13 (3) (1995) 109116.
Auboiron E., La multiplication sur souche décortiquée, Fiche technique, CARBAP, Njombé, Cameroun, 1997, 4 p.
Kwa M., Le matériel de plantation : base d'une dynamique des productions bananières durables, in: Picq C., Fouré E., Frison E.A. (Eds.), Les productions bananières : un enjeu économique majeur pour la sécurité alimentaire, INIBAP, Symp. Int., Douala, Cameroun, 1998.
Kwa M., Architecture, morphogenèse et anatomie de quelques cultivars de bananiers, thèse, USTL, Montpellier, France, 1993, 287 p.
Devos, P., The location of lateral buds of banana (Musa sp.) clarified by the discovery of two new types of adventitious buds within the AAB plantain group, Fruits 40 (7–8) (1985) 471474.
Vuylsteke D.R., Shoot-tip culture for propagation, conservation, and distribution of Musa germplasm, IITA, Ibadan, Nigeria, 1998, 73 p.
Domergue R., Contribution à l'amélioration de la micropropagation du bananier plantain, Mém. DESS, Montpellier II, France, 1990, 63 p.
Cote F., Alvard D., Domergue R., Navarro-Mastache L.C., Teisson C., Micropropagation in vitro du bananier, Fruits 45 (numér. spéc.) (1990) 112–118.
Vessey, J.C., Rivera, J.A., Meristem culture of bananas, Turrialba 31 (1981) 162163.
Navarro Mastache L.C., Incidence des facteurs de croissance in vitro sur le transfert des plants de bananiers cv. Petite Naine, mém. DEA, INP-Ensap, Toulouse, France, 1987, 102 p.
Hirimburregama, K., Gamage, N., Cultivar specificity with respect to in vitro micropropagation of Musa spp. (banana and plantain), J. Hortic. Sci. 72 (2) (1997) 205211. CrossRef