Hostname: page-component-848d4c4894-r5zm4 Total loading time: 0 Render date: 2024-06-28T00:08:45.620Z Has data issue: false hasContentIssue false

FIELD BIOASSAY METHODOLOGIES FOR THE DETECTION OF RESISTANCE TO ACARICIDES IN POPULATIONS OF EUROPEAN RED MITE (ACARI: TETRANYCHIDAE)

Published online by Cambridge University Press:  31 May 2012

D.J. Pree*
Affiliation:
Southern Crop Protection and Food Research Centre, Agriculture and Agri-Food Canada, Vineland Station, Ontario, Canada L0R 2E0
L.A. Bittner
Affiliation:
Southern Crop Protection and Food Research Centre, Agriculture and Agri-Food Canada, Vineland Station, Ontario, Canada L0R 2E0
K.J. Whitty
Affiliation:
Southern Crop Protection and Food Research Centre, Agriculture and Agri-Food Canada, Vineland Station, Ontario, Canada L0R 2E0
*
1 Author to whom all corresponding should be addressed.

Abstract

The toxicity of dicofol, pyridaben, formetanate HCl, and abamectin to European red mite, Panonychus ulmi (Koch), was determined using either a Petri dish or leaf dip bioassay (as potential field assay procedures) and was compared with results from a standard laboratory procedure that requires a Potter spray tower to treat leaf disks. Abamectin and pyridaben were the most toxic acaricides tested, and dicofol and pyridaben were more toxic when applied to Petri dishes than to leaf disks. Formetanate HCl was the least toxic acaricide tested by either leaf disk or leaf dip procedures. Diagnostic concentrations of pyridaben were determined as 5 mg active ingredient per litre (a.i./L) with the Petri dish assay and 15 mg a.i./L with the leaf disk assay. Mortality of European red mites to pyridaben at diagnostic concentrations was consistently 100% with the leaf disk assay and > 90% with the Petri dish assay. Residues of pyridaben on Petri dishes stored at 4 °C in a refrigerator were stable for at least 21 d. For dicofol, both leaf disk and Petri dish assays gave similar results, and 25 mg a.i./L, previously used as the diagnostic concentration in the Petri dish assay, resulted in > 99% mortality of the standard susceptible strain. This technique identified resistant individuals in all of the field populations tested. Abamectin applied at 2 mg a.i./L to leaf disks consistently gave 98–100% mortality, but results at 2 mg a.i./L with the Petri dish assay gave variable results and this was not a reliable technique for monitoring resistance. Concentrations of formetanate HCl required for the leaf dip assay were too high to be useful in field assays; however, all populations of European red mite tested using the leaf disk assay appeared susceptible. For the ovicide, clofentezine, mortality of eggs tested by the leaf disk assay at 100 or 500 mg a.i./L ranged from 89 to 100%. Results with the leaf dip procedure, using a 350 mg a.i./L suspension consistently resulted in > 96% mortality of eggs from susceptible field populations. These procedures are a useful tool in the development of resistance management programs for acaricides used in integrated pest management (IPM) systems for tree fruits.

Résumé

Nous avons tenté de déterminer la toxicité de divers acaricides, dicofol, pyridaben, clofentézine, formétanate HCl, abamectine, pour la Tétranyque rouge du pommier, Panonychus ulmi (Koch) par des expériences en vase de Pétri ou par trempage de feuilles (procédures pouvant éventuellement être utilisées sur le terrain) et avons comparé les résultats à ceux d’une méthode classique de laboratoire dans laquelle des rondelles de feuilles sont traitées au moyen d’un vaporisateur Potter. L’abamectine et le pyridaben se sont avérés les acaricides les plus toxiques et le dicofol et le pyridaben étaient plus toxiques dans les pétris que sur les rondelles de feuille. Le formétanate HCl était l’acaricide le moins toxique de tous sur les rondelles de feuille comme sur les feuilles trempées. Les concentrations décelables de pyridaben ont été évaluées à 5 mg d’ingrédient actif/L (a.i./L) dans les expériences en pétri et à 15 mg a.i./L dans les expériences sur les rondelles de feuilles. La mortalité des acariens à l’administration de pyridaben était toujours de 100% sur les rondelles de feuilles et de > 90% dans les pétris. Les résidus de pyridaben dans les pétris se sont avérés stables pendant au moins 21 jours lorsqu’ils ont été placés au réfrigérateur à 4 °C. Les expériences sur les rondelles de feuille et dans le pétris ont donné les mêmes résultats avec le dicofol et une concentration de 25 mg a.i./L, prédéterminée au cours d’expériences dans des pétris, a entraîné une mortalité > 99% de la souche standard sensible. Cette technique a permis de reconnaître tous les individus résistants dans toutes les populations naturelles testées. L’abamectine appliquée à raison de 2 mg a.i./L à des rondelles de feuille causait invariablement une mortalité de 98–100%, mais les résultats avec cette concentration dans les pétris étaient variables et la fiabilité de cette technique pour mesurer la résistance des acariens était faible. Les concentrations de formétanate HCl requises dans les expériences de trempage étaient trop élevées pour que la méthode puisse être utile; cependant toutes les populations de tétranyques utilisées au cours de tests semblaient sensibles au pesticide. Après application de l’ovicide clofentazine à raison de 100 ou 500 mg a.i./L, la mortalité des oeufs évaluée au cours de tests sur des rondelles de feuilles a été estimée à 89–100%. Les résultats du procédé de trempage dans une suspension de 350 mg a.i./L causaient invariablement la mort de > 96% des oeufs chez des populations naturelles sensibles. Ces méthodes constituent un outil très utile dans les programmes d’aménagement axés sur la résistance aux acaricides utilisés dans les systèmes intégrés de lutte dans les vergers d’arbres fruitiers.

[Traduit par la Rédaction]

Type
Articles
Copyright
Copyright © Entomological Society of Canada 2000

Access options

Get access to the full version of this content by using one of the access options below. (Log in options will check for institutional or personal access. Content may require purchase if you do not have access.)

References

Beers, E.H., Andersen, A., Brown, R.D. 1997. Absorption and translaminar activity of abamectin in apple and pear foliage as determined by spider mite (Acari: Tetranychidae) mortality. Journal of Economic Entomology 90: 566–73CrossRefGoogle Scholar
Cranham, J.E. 1982. Pome fruit pest management in northern Europe. Scientific Horticulture 33: 100–12Google Scholar
Dennehy, T.J., Grafton-Cardwell, E.E., Granett, J., Barbour, K. 1987. Practitioner-assessable bioassay for detection of dicofol resistance in spider mites (Acari: Tetranychidae). Journal of Economic Entomology 80: 9981003CrossRefGoogle Scholar
Ffrench-Constant, R.H., Roush, R.T. 1990. Resistance detection and documentation: the relative roles of pesticidal and biochemical assays. pp. 438in Roush, R.T., Tabashnik, B.E. (Eds.), Pesticide resistance in arthropods. London: Chapman and HallCrossRefGoogle Scholar
Herne, D.H.C. 1971. Methodology for assessing resistance in the European red mite. pp. 663–7 in Proceedings of the 3rd International Congress of Acarology, Prague.Google Scholar
Herron, G.A., Rophail, J. 1998. Tebufenpyrad (Pyranica) resistance detected in two-spotted spider mite Tetranychus urticae Koch (Acari; Tetranychidae) from apples in western Australia. Experimental and Applied Acarology 22: 633–41CrossRefGoogle Scholar
Insecticide Resistance Action Committee. 1990. Proposed insecticide/acaricide susceptibility tests developed by the Insecticide Resistance Action Committee. European Plant Protection Bulletin 20: 389404Google Scholar
Knight, A.L., Beers, E.H., Hoyt, S.C., Riedl, H. 1990. Acaricide bioassays with spider mites (Acari: Tetranychidae) on pome fruits: evaluation of methods and selection of discriminating concentrations for resistance management. Journal of Economic Entomology 83: 1752–60CrossRefGoogle Scholar
Mable, B.K., Pree, D.J. 1992. Stability of dicofol resistance in populations of European red mite (Acari: Tetranychidae) on apples in southern Ontario. Journal of Economic Entomology 85: 642–50CrossRefGoogle Scholar
Pree, D.J. 1987. Inheritance and management of cyhexatin and dicofol resistance in the European red mite (Acari: Tetranychidae). Journal of Economic Entomology 80: 1106–12CrossRefGoogle Scholar
Pree, D.J., Wagner, H.W. 1987. Occurrence of cyhexatin and dicofol resistance in the European red mite, Panonychus ulmi (Koch) (Acari: Tetranychidae), in southern Ontario. The Canadian Entomologist 119: 287–90CrossRefGoogle Scholar
Pree, D.J., Cole, K.J., Fisher, P.A. 1989. Comparison of leaf disc and petri dish assays for the assessment of dicofol resistance in populations of European red mite (Acari: Tetranychidae) from southern Ontario. The Canadian Entomologist 121: 771–6CrossRefGoogle Scholar
Robertson, J.L., Priesler, H.K. 1992. Pesticide bioassays with arthropods. Boca Raton: CRC PressGoogle Scholar
Robertson, J.L., Priesler, H.K., Ng, S.S., Hickle, L.A., Gelertner, W.D. 1995. Natural variation: a complicating factor in bioassays with chemical and microbial pesticides. Journal of Economic Entomology 88: 110CrossRefGoogle Scholar
Roush, R.T., Miller, G.L. 1986. Considerations for the design of insecticide resistance monitoring programs. Journal of Economic Entomology 79: 293–8CrossRefGoogle Scholar